GMS150高精度氣體調(diào)控系統(tǒng) 返回列表頁

GMS150高精度氣體調(diào)控系統(tǒng)可以將多4種不同氣體進行精確混合。每路輸入氣體的流量使用熱式質(zhì)量流量計精確測量，并由內(nèi)置的質(zhì)量流量控制器進行精準控制，輸出的是*混合的均質(zhì)氣體。氣體輸入輸出使用Prestolok快速安全接頭，保證使用過程中的便捷性與安全性。

GMS150高精度氣體調(diào)控系統(tǒng)可用于二氧化碳、氮氣、一氧化碳、甲烷、氨氣以及其他氣體的濃度控制。

GMS150高精度氣體調(diào)控系統(tǒng)分為GMS150版和GMS150-MICRO版，其中GMS150版精度更高，GMS150-MICRO版可調(diào)控流速更大。

應用領域：

?與植物培養(yǎng)箱、光養(yǎng)生物反應器等聯(lián)用，進行精確氣體控制培養(yǎng)

?模擬不同CO₂濃度環(huán)境，研究溫室效應對植物/藻類的影響

?研究CO₂濃度與光合作用的關系

?模擬煙氣等有害氣體對植物/藻類的影響

?研究植物/藻類對有害氣體的處理與利用

技術參數(shù)：

?測量原理：熱式質(zhì)量流量測量法

?可調(diào)控氣體：空氣、氮氣、二氧化碳、氧氣、一氧化碳、甲烷、氨氣等干燥純凈、無腐蝕性、無爆炸性氣體，氣源需用戶自備

?調(diào)控通道：標配為2通道，通道1為Air-N₂，通道2為CO₂，多可擴展為4通道

?工作溫度：15-50℃

?輸入/輸出接頭：Parker Prestolok接頭(6mm)

?輸入壓力：3-5bar

?密封：氟化橡膠

?顯示屏：8×21字符液晶顯示屏

?尺寸：37cm×28×15cm

?供電：115-230V交流電

?可聯(lián)用儀器：FMT150藻類培養(yǎng)與在線監(jiān)測系統(tǒng)、MC1000 8通道藻類培養(yǎng)與在線監(jiān)測系統(tǒng)、FytoScope系列智能LED光源生長箱、用戶自行設計的培養(yǎng)箱或反應器（可提供氣路連接方案）等

GMS150版調(diào)控參數(shù)：

?小流量范圍：0.02 - 1 ml/min

?大流量范圍：20 - 1000 ml/min

?可定制流量范圍：可在大流量和小流量之間定制。標準配置通道1(Air-N₂): 20-1000 ml/min；通道2(CO₂): 0.4-20 ml/min；可調(diào)控CO₂濃度0.04% - *（實際調(diào)控濃度與流量有關）

?精度：±0.5%，加全量程±0.1%（3-5ml/min為全量程±1%，＜3ml/min為全量程±2%）

?穩(wěn)定性：<全量程±0.1%（參考1ml/min N₂）

?穩(wěn)定時間：1~2s

?預熱時間：30min預熱達到精度，2min預熱偏差±2%

?溫度靈敏度：<0.05%/℃

?壓力靈敏度：0.1%/bar（參考N₂）

?姿態(tài)靈敏度：1bar 壓力下與水平面保持90°大*.2%（參考N₂）

?重量：7kg

GMS150-MICRO版調(diào)控參數(shù)：

?小流量范圍：0.2 - 10 ml/min

?大流量范圍：100 - 5000 ml/min

?可定制流量范圍：可在大流量和小流量之間定制。標準配置通道1(Air-N₂): 40-2000 ml/min；通道2(CO₂): 0.8-40 ml/min；可調(diào)控CO₂濃度0.04% - *（實際調(diào)控濃度與流量有關）

?精度：±1.5%，加全量程±0.5%

?重復性：流量<20 ml/min為全量程±0.5%，流量>20 ml/min為實際流量±0.5%

?穩(wěn)定時間：1s

?預熱時間：30min預熱達到精度，2min預熱偏差±2%

?溫度靈敏度：零點<0.01%/℃，滿度<0.02%/℃

?姿態(tài)靈敏度：1bar 壓力下與水平面保持90°大*.5 ml/min（參考N₂）

?重量：5kg

應用案例：

與FMT150藻類培養(yǎng)與在線監(jiān)測系統(tǒng)聯(lián)用研究藍藻Cyanothece sp. ATCC 51142 的超日代謝節(jié)律（Cerveny, 2013, PNAS）

產(chǎn)地：歐洲

參考文獻：

1.Strenkert D, et al. 2019. Multiomics resolution of molecular events during a day in the life of Chlamydomonas. PNAS, 116 (6): 2374-2383

2.Suka?ová K, et al. 2019. Optimization of microalgal growth and c*tion parameters for increasing bioenergy potential: Case study using the oleaginous microalga Chlorella pyrenoidosa Chick (IPPAS C2). Algal Research 40: 101519

3.Cordara A, et al. 2018. Analysis of the light intensity dependence of the growth of Synechocystis and of the light distribution in a photobioreactor energized by 635 nm light. PeerJ, 6:e5256, DOI 10.7717/peerj.5256

4.Cordara A, et al. 2018. Response of the thylakoid proteome of Synechocystis sp. PCC 6803 to photohinibitory intensities of orange-red light. Plant physiology and biochemistry, 132: 524-534

5.Alphen P, et al. 2018. Increasing the Photoautotrophic Growth Rate of Synechocystis sp. PCC 6803 by Identifying the Limitations of Its C*tion. Biotechnology Journal 13(8): 700764

6.Sarayloo E, et al. 2018. Enhancement of the lipid productivity and fatty acid methyl ester profile of Chlorella vulgaris by two rounds of mutagenesis. Bioresource Technology, 250: 764-769

7.Mitchell M C, et al. 2017. Pyrenoid loss impairs carbon-conceating mechanism induction and alters primary metabolism in Chlamydomonas reinhardtii. Journal of Experimental Botany, 68(14): 3891-3902

8.Hulatt C J, et al. 2017. Polar snow algae as a valuable source of lipids? Bioresource Technology, 235: 338-347

9.Jouhet J, et al. 2017. LC-MS/MS versus TLC plus GC methods: Consistency of glycerolipid and fatty acid profiles in microalgae and higher plant cells and effect of a nitrogen starvation. PLoS ONE 12(8): e0182423

10.Angermayr S A, et al. 2016. Culturing Synechocystis sp. Strain PCC 6803 with N₂ and CO₂ in a Diel Regime Reveals Multiphase Glycogen Dynamics with Low Maintenance Costs. Appl. Environ. Microbiol., 82(14):4180-4189

11.Acu?a A M, et al. 2016. A method to decompose spectral changes in Synechocystis PCC 6803 during light-induced state transitions. Photosynthesis Research, 130(1-3): 237-249